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中科大王育才/李敏團隊 Nat. Biomed. Eng.: 設計低免疫原性mRNA遞送載體在體內重編程耐受性APC
2025-04-01  來源:高分子科技
  自身免疫疾病(AIDs)由異常活化的T細胞攻擊宿主自身組織引發,而現有療法(如單克隆抗體或重組蛋白)雖能抑制T細胞活性,卻因缺乏靶向性而導致全身免疫抑制,可能引發嚴重副作用。mRNA技術可通過編程蛋白表達精準調控免疫反應,但其核心遞送載體脂質納米顆粒(LNPs)因固有免疫刺激性,會激活抗原提呈細胞(APCs)并觸發炎癥反應,與AIDs治療所需的免疫耐受目標相矛盾。這一技術悖論成為mRNA療法向自身免疫領域拓展的核心障礙。因此,開發同時具備低免疫原性和能夠精準靶向APCs的mRNA遞送系統,是實現mRNA免疫耐受療法的核心。




  近日,中國科學技術大學王育才/李敏團隊在《Nature Biomedical Engineering》在線發表研究論文,提出了一種基于活體篩選優化的低免疫原性LNPs遞送PD-L1 mRNA的策略,實現了體內直接生成tol-APCs。研究團隊利用實驗設計(DOE),系統篩選LNPs的N/P比及脂質組成,并通過活體篩選評估免疫原性,最終篩選出既能高效轉染APCs、又不誘導免疫激活的最優LNPs配方。優化后的LNPs可在體內精準遞送PD-L1 mRNA,使APCs高效表達PD-L1,同時避免炎癥信號激活。在類風濕性關節炎和潰瘍性結腸炎模型中,該策略能夠選擇性抑制致病T細胞,同時促進Treg擴增,突破了mRNA技術在免疫調控中的應用局限,開辟了“體內耐受性免疫細胞工程”新方向(圖1)。


  相比于傳統mRNA遞送系統(如COVID-19疫苗所用的LNPs),本研究優化的低免疫原性LNPs能夠精準靶向APCs,避免其表面共刺激分子(CD80/CD86/CD40)的異常上調,減少炎癥反應,同時保證mRNA的高效表達。這一策略不僅為mRNA技術在自身免疫疾病治療領域提供了新的可能,也為“體內耐受性免疫細胞工程”奠定了基礎。



圖1. 低免疫原性遞送mRNA生成tol-APCs用于自身免疫性疾病治療。


低免疫原性LNPs的定向設計與優化


  傳統mRNA遞送系統(如COVID-19疫苗使用的LNPs)通過激活APCs表面的共刺激分子(CD80/CD86/CD40)介導強效免疫應答,但這與自身免疫病治療所需的免疫抑制目標相矛盾。為解決這一問題,研究團隊采用實驗設計(DOE)系統調整LNPs的四種組分(SM-102、DSPC、DMG-PEG2000、膽固醇)的摩爾比例與N/P比,構建LNPs庫。通過Taguchi正交實驗優化,并通過兩輪篩選,確定了具有低免疫原性、高表達效率的LNP配方。該配方顯著降低APC表面共刺激分子CD80/CD86/CD40的表達水平,同時保持轉染效率穩定。使用該配方LNPs封裝編碼PDL1的mRNA(LNPs/mPDL1),并經小鼠皮下注射后,淋巴結CD11c+和CD11b+細胞PDL1表達顯著升高,說明了tol-APCs的成功生成,而骨髓中未檢測到tol-APCs生成,且LNPs/mPDL1對非APC的免疫細胞影響極小,表明經優化的LNPs成功實現低免疫原性遞送PDL1 mRNA至APCs,實現tol-APCs的在體生成(圖2)。



圖2. LNP優化策略以實現低免疫原性遞送mRNA。


1. 從體外到體內的tol-APCs生成與功能驗證


  體外模型中,DC2.4(樹突狀細胞系)和RAW264.7(巨噬細胞系)經LNPs/mPDL1處理后,表面PDL1蛋白表達量顯著提升2-3倍,證實其向tol-APCs的轉化能力。而在體內模型中,LNPs優先靶向淋巴結和脾臟中的CD11c+/CD11b+ APC細胞,表面PDL1陽性率顯著提高,而非APC細胞幾乎無表達。此外,研究團隊發現,LNPs/mPDL1處理后,tol-APCs的在體生成可維持4天左右,保證了其生成的有效性與可調控性(圖3)。



圖3. LNP/mPDL1誘導生成tol-APCs。


  研究團隊隨后對生成的tol-APCs功能進行驗證。PD1在活化的T細胞中通常呈現高表達,而在初始T細胞中表達水平較低,其在防止T細胞過度活化和促進免疫耐受中發揮關鍵作用。研究團隊使用CD3/CD28激動性抗體(αCD3/CD28)刺激T細胞高表達PD1,來模擬活化的T細胞狀態,并與LNPs/mPDL1體外誘導生成的tol-APCs共培養;流式細胞術結果顯示tol-APCs顯著促進活化T細胞的凋亡,而對未活化T細胞無影響,提示其通過PDL1/PD1通路選擇性抑制活化T細胞。類似地,tol-APCs與T細胞共培養48小時后,流式細胞檢測到活化CD4+ 和CD8+ T細胞的增殖均顯著降低(圖4)。



圖4. LNP/mPDL1生成的tol-APCs在體外減少活化T細胞增殖并誘導其凋亡。


  此外,該研究通過過繼細胞轉輸實驗探究了LNPs/mPDL1誘導的體內tol-APCs對活化T細胞抑制作用的選擇性。分離Balb/c小鼠脾臟T細胞并對部分T細胞刺激活化,將活化/未活化T細胞按1:1比例混合后過繼轉移到LNPs/mPDL1處理后BALB/c裸鼠體內(最小化宿主免疫系統的影響)。流式細胞術結果證實了受體小鼠體內成功生成耐受性DCs,同時與對照組相比,LNPs/mPDL1處理組活化T細胞比例顯著減少,T細胞中活化T細胞/非活化T細胞的比值也顯著降低。LNPs/mPDL1在體內選擇性減少CD4+ 和CD8+ 活化T細胞比例的同時,也增加了非活化T細胞的比例。這些結果表明,皮下注射的LNPs/mPDL1能夠選擇性地清除過度活化的T細胞,同時對靜息T細胞影響極小,凸顯了該方法的特異性與治療的安全性(圖5)。



圖5. tol-APCs選擇性減少體內活化T細胞。


2. 媲美臨床藥物誘導免疫抑制的效果


  隨后,研究團隊構建了疾病模型來驗證LNPs/mPDL1對自身免疫病模型的治療效果。在Ⅱ型膠原免疫誘導的類風濕性關節炎(RA)模型中,DBA/1小鼠經LNPs/mPDL1治療后,關節腫脹評分顯著降低,且軟骨損傷程度接近正常水平(通過番紅固綠染色評估)。滑膜組織免疫組化分析顯示,IFN-γ和TNF-α的表達量水平降低,CD4+ 和CD8+ T細胞浸潤減少,而Tregs比例增加。值得注意的是,治療組的關節炎癥評分與TNF-α抑制劑依那西普相當,證實LNPs/mPDL1有效緩解RA癥狀(圖6)。



圖6. LNP/mPDL1體內生成的tol-APCs抑制RA進展。


  研究團隊隨后對LNPs/mPDL1在另一自身免疫疾病——潰瘍性結腸炎(UC)模型的治療效果進行了評估。C57BL/6小鼠經DSS誘導后出現嚴重結腸縮短(平均長度5.6 cm)和黏膜損傷。LNPs/mPDL1治療組結腸長度恢復至正常水平(6.6 cm),且黏膜結構完整,隱窩破壞顯著緩解,且其治療效果與環孢素相當。同時LNPs/mPDL1治療顯著減少腸道炎癥部位的CD4+ 和CD8+ T細胞浸潤,增加了Treg數量,并降低TNF-α水平;此外,研究團隊還發現,LNPs/mPDL1顯著降低了腸系膜、腹股溝淋巴結、脾臟和血液中的效應T細胞(圖7)。



圖7. 體內生成的tol-APCs在UC小鼠模型中發揮治療作用。


  該團隊通過優化LNPs的N/P比與脂質組成,顯著降低載體免疫原性,使APCs特異性高表達PD-L1而不引發炎癥反應,從而精準抑制致病性T細胞活性并擴增Treg。在RA和UC模型中,其療效優于臨床標準藥物依那西普與環孢素,且單次治療成本不足傳統體外細胞療法的1%,兼具高效性與經濟性。研究突破傳統療法的三大局限:無需體外操作,皮下注射直接靶向APCs;廣譜適應,非抗原特異性模式適用于病因不明的自身免疫病(如UC),而加載特定抗原可拓展至多發性硬化癥等疾病;平臺化擴展,未來可整合CTLA-4等共抑制分子或趨化受體增強療效,或通過肝靶向遞送誘導移植免疫耐受。此項成果以“體內細胞編程”理念,為自身免疫病、器官移植及蛋白替代療法提供全新范式,推動個體化醫療向精準免疫重塑邁進。


  中國科學技術大學劉洋博士、劉潛博士、博士生張寶文為該論文共同第一作者,中國科學技術大學王育才教授、李敏副教授為本文共同通訊作者;團隊其他成員及合作者也為本研究做出了重要貢獻。


  原文鏈接:https://www.nature.com/articles/s41551-025-01373-0

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